Переливание консервированной крови: основные понятия

Ведущие специалисты в области гематологии

Проф.Круглов С.В. и Крючкова О.А.

Проф.Круглов С.В. и Крючкова О.А.

Автор проекта: Круглов Сергей Владимирович, профессор, заслуженный врач России, доктор медицинских наук, врач высшей квалификационной категории

Подробнее

Запись на прием


 

Редактор страницы: Крючкова Оксана Александровна — врач-травматолог-ортопед

Подробнее


Шатохин Юрий Васильевич

Профессор Шатохин Юрий Васильевич

ДМН, Зав. кафедрой гематологии РостГМУ.

Подробнее / Отзывы


Лысенко Ирина БорисовнаПрофессор Лысенко Ирина Борисовна

ДМН, Зав. отд. гематологии Ростовского Онкологического Института.

Подробнее / Отзывы


Снежко Ирина ВикторовнаСнежко Ирина Викторовна

Кандидат медицинских наук Ассистент кафедры гематологии РостГМУ Врач высшей квалификационной категории.

Подробнее / Отзывы


Шамрай Владимир СтепановичШамрай Владимир Степанович

Врач высшей квалификационной категории, заведующий гематологическим отделом.

Подробнее / Отзывы



 

Переливание консервированной крови: основные понятия

Организация переливания консервированной крови предусматривает предельное упрощение методики гемотрансфузии. Обычно кровь собирают и консервируют в стандартных банках ЦИПК емкостью 250 и 500 мл, а также в ампулах емкостью 50, 75, 125 и 250 мл. Герметизация банок и ампул обеспечивает стерильность крови, а их укупорка — простоту приспособления для целей переливания.

Выше уже было сказано об общих технических правилах трансфузии. Остановимся детально на технике переливания консервированной крови. Прежде всего1 необходимо самым тщательным образом определять пригодность консервированной крови. Определение пригодности консервированной крови производится ежедневно при хорошем освещении врачом, заведующим кабинетом переливания крови данного лечебного учреждения. При этом необходимо обращать внимание на сохранность этикетки и контрольного ярлыка. Кроме того, перед каждой трансфузией консервированной крови заведующий кабинетом переливания крови и каждый врач, производящий эту операцию, обязаны лично сами определить пригодность этой крови для целей переливания.

Требуется опыт в определении годности консервированной крови, так как брать пробы на стерильность и для биохимических исследований крови нельзя — в этом случае возможно ее инфицирование. Поэтому оценка пригодности крови состоит в определении сроков ее хранения и в тщательном осмотре.

Сроки годности консервированной крови таковы:

при консервации на глюкозо-цитратной среде максимальным сроком хранения крови считается 30—40 дней, а при консервации только на цитрате— 10—15 дней.

Оценка годности консервированной крови. При хранении крови на леднике в течение 12—24 часов и больше осмотр ее врачом должен осуществляться на месте, так как при переноске кровь может быть взболтана.

Бели кровь не отстоялась, требуется центрифугирование 5—10 мл крови в пробирке.

Банку или ампулу с кровью вынимают из ледника и осматривают со всех сторон при хорошем освещении.

Прежде всего осматривают поверхность плазмы — она должна быть гладкой. Наличие островков пленки на поверхности плазмы свидетельствует о возможности инфицирования крови. Затем при хорошем освещении рассматривают плазму. Она должна быть прозрачной, светло-желтого или желто-зеленоватого цвета, без признаков мути и хлопьев. Иногда у доноров, поевших жирную пищу перед взятием крови, плазма бывает мутной и окрашенной в беловатый цвет. Нередко вся поверхность такой плазмы бывает также покрыта ровным белым налетом. При согревании этой «жирной», или «сытой», крови (38°) до взбалтывания происходит растворение жировых частиц, и плазма становится прозрачной. Такая кровь пригодна для переливания. Пленка на инфицированной крови при согревании не изменяет своего вида.

При наличии инфекции цвет плазмы часто- изменяется, становится тускло-серым, бурым, она теряет прозрачность, в ней появляются взвешенные частицы, хлопья — такую кровь переливать нельзя.

Подлежат также учету первоначальные признаки гемолиза.

В отстоявшейся консервированной крови нормальная граница между плазмой и глобулярной массой представляется в 1виде четкой ровной линии, причем над основным слоем эритроцитов бывает виден тонкий (1 мм) белый слой лейкоцитов.

Начало гемолиза характеризуется появлением небольшого кольца розов ото окрашивания плазмы над слоем лейкоцитов. Граница между плазмой и глобулярной массой крови в этом случае будет неровной, как бы размытой.

Если такая картина наблюдается в ранние сроки консервации, следует подумать о возможной инфекции, которая часто начинается с гемолиза. Эту кровь нужно отставить и наблюдать 3—4 дня. Если гемолиз усиливается, кровь переливать нельзя. В дальнейшем, при инфекции, а также при длительном (свыше 30—40 дней консервации) хранении крови, в зависимости от качества консервирующей среды, развивается более заметный гемолиз; плазма становится розовой. Такая кровь непригодна для переливания.

Следует помнить о том, что при длительной перевозке крови оседание эритроцитов может быть задержано, тогда плазма длительное время бывает окрашена в розовый цвет, что симулирует гемолиз. В этих случаях центрифугирование 5 мл крови в пробирке разрешает сомнения — при истинном гемолизе розовое окрашивание плазмы сохраняется и после центрифугирования. Такую кровь следует забраковать.

Кроме раннего появления гемолиза, признаками инфицирования консервированной крови являются: помутнение плазмы, появление пленки, налета, о чем было сказано выше, желатинизация (коагуляция) плазмы, выделение газов, заметное при открывании ампулы или банки, а также неприятный запах.

Наконец, врач должен определить наличие или отсутствие в крови сгустков. Мелкие сгустки не препятствуют переливанию. Если в аппарате или ампуле есть фильтр, кровь можно переливать без предварительного фильтрования. При отсутствии специального фильтра кровь переливают в другую посуду через воронку, покрытую шестью слоями марли, смоченной 4% раствором лимоннокислого натрия.

Наличие в консервированной крови большого количества сгустков говорит о непригодности ее.

Переливание консервированной крови из стандартной банки ЦИПК или бутылей подобного типа. После определения пригодности консервированной крови и ее обогревания (при необходимости не выше, чем до 37—38°) медицинская сестра тщательно вытирает банку, показывает врачу этикетку и срезает ножницами шпагат с пломбой. После этого она
снимает вощаную бумагу, закрывающую пробку, и тщательно удаляет парафин. Другая сестра с вымытыми и обработанными спиртом руками, в стерильном халате и маске собирает стерильный набор для переливания
крови: резиновую пробку с двумя отверстиями, через которые проведены две стеклянные трубки. Одна из
этих трубок — короткая, выступающая от внутренней поверхности пробки на 1,5 см, соединена с длинной резиновой трубкой длиной 50 см, которая заканчивается канюлей —надсадкой для иглы.

Обязательно включение в эту систему, отступя 10 см от канюли, контрольной стеклянной трубки длиной 4—5 см.

Через второе отверстие резиновой пробки введена длинная стеклянная трубка, которая должна доходить почти до дна стандартной банки. Конец этой трубки, выступающий над внешней поверхностью пробки, соединен с воздушным фильтром (рис. 27).

Перед сборкой аппарата необходимо промыть систему физиологическим раствором. После этого первая медицинская сестра осторожно вынимает пробку из банки, а вторая вставляет в банку новую пробку, соединенную е описанной выше системой трубок.

Первая медицинская сестра тщательно вводит пробку, укрепляет ее марлевой Т-образной повязкой,

закрывает резиновую трубку зажимом и опрокидывает банку вверх дном. Зажим с канюлей и концом резиновой трубки нуж

но поднять выше банки, затем зажим слегка открывают и после этого канюлю с трубкой опускают ниже банки. Этим приемом вытесняется часть крови с пузырьками воздуха из системы трубок. После закрытия зажима аппарат готов для переливания крови. Врач вводит иглу в вену больного и соединяет ее с надсадкой, зажим

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 28. Переливание крови из банки ЦИПК.

снимают, устанавливают ток крови в аппарате (рис. 28). При необходимости перелить больше одной банки крови вторую систему готовят так же, как и первую.

Переливание консервированной крови стандартной ампулой ЦИПК- Т а к же как и стандартную банку ЦИПК, ампулу извлекают из ледника, определяют пригодность консервированной крови, проверяют этикетку и протирают поверхность ампулы. Затем стерильными ножницами после  предварительной

очистки спиртом срезают короткую резиновую трубку и освобождают конец стеклянной трубки у фильтра. На него осторожно, соблюдая асептику, надевают резиновую трубку стерильной, промытой системы, закрытой зажимом. Только- после этого ампулу переводят в вертикальное положение и снимают резиновую трубку, закрываю-

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 29. Переливание крови из ампулы ЦИПК.

щую верхнее отверстие ампулы. На этот конец надевают короткую резиновую трубку с ватным фильтром или этот тубус закрывают марлевой стерильной салфеткой. Теперь можно вытеснить из системы трубок воздух и, соединив ее с иглой, введенной в вену больного, начать переливание (рис. 29).

При переливании больших количеств крови после

использования первой ампулы лучше всего подготовить новую систему трубок, соединить ее с новой ампулой,

%d1%80%d0%b8%d1%81-30Рис. 30. Присоединение второй ампулы верхнему тубусу первой ампулы при продолжающемся переливании крови.

а затем с иглой, которая остается в вене больного. Если нет другой системы трубок, можно отрезать трубку от основания ампулы и затем соединить ее с новой ампулой. В ряде случаев пользуются приемом, показанным на рис. 30

Необходимо подчеркнуть, что после каждого переливания консервированной крови в журнал вносятся данные о перелитой
крови, а этикетка снимается с банки или ампулы, высушивается и вклеивается в
историю болезни. Кроме того, следует всегда оставить несколько миллилитров консервированной крови в стерильной пробирке на сутки и поместить ее в ледник на случай необходимости проверки крови. В Ленинградском институте переливания крови применяется сифонный метод трансфузии по
А. Н. Филатову. На рис. 31 изображен стеклянный сифон и система трубок к нему. Сифон перед переливанием погружают в банку или в бутыль с кровью.

Переливание эритроцитарной массы А. А. Богомолец в 1936 г. писал: «Огромное практическое значение и большой научный интерес представила бы сравнительная оценка трансфузии индивидуально совместимых эритроцитов и плазмы в отдельности».

В 1944 г. Б. А. Петров переливал концентрированную взвесь эритроцитов при ряде хирургических заболеваний

и наблюдал при этом хорошие результаты лечения. А. И. Кизилова и Е. С. Сальковская сообщают о 827 переливаниях эритроцитов у больных с анемией, лейкозами, легочными нагноениями и другими заболеваниями.

В дальнейшем в советской печати опубликованы аналогичные работы X. X. Влад оса, А. П. Лебедева и других авторов. Во всех работах отмечается весьма положительное влияние трансфузий взвеси эритроцитов при ряде заболеваний.

Переливание эритроцитарной массы обладает в основном активным заместительным действием. Поэтому желательно производить трансфузию концентрированной взвеси эритроцитов, имеющую в своем составе до 130 — 140% гемоглобина и до 8 000 000—9 000 000 эритроцитов. В этих же целях желательно пользоваться свежеконсервированной эритроцитарной взвесью в пределах 2—3 дней после окончания процесса разделения плазмы от эритроцитов, т. е. 4—6-суточной давности. Допустимо переливание эритроцитарной массы до 12—15 суток хранения. Более длительное консервирование эритроцитов, отделенных от плазмы, приводит к потере резистентности эритроцитов и к гемолизу.

Методика разделения эритроцитов и плазмы стабилизированной крови имеет большое значение.

Она должна быть щадящей, осторожной. Следует подчеркнуть, что современное состояние проблемы переливания крови настойчиво требует организации этого процесса, так как в связи с расширением показаний к раздельному переливанию плазмы и эритроцитов нецелесообразно использовать плазму и игнорировать применение весьма ценной массы эритроцитов.

Для разделения эритроцитов и плазмы необходимо пользоваться естественным процессом осаждения глобулярной массы крови, имеющей по сравнению с плазмой больший удельный вес. В среднем полное осаждение эритроцитов происходит в течение 24—48 часов. Прибегать к центрифугированию не следует, так как оно травмирует эритроциты.

Отделение эритроцитов от плазмы по указанным выше соображениям нужно производить сразу после отстоя консервированной крови.

В Центральном ордена Ленина институте гематологии и переливания крови консервирование эритроцитарной массы производится двумя способами: 1) консервирование концентрированной эритроцитарной массы и 2) консервирование взвеси эритроцитов в замещающих плазму растворах.

Заготовка эритроцитарной массы производится в отдельной боксированной операционной.

Для отсасывания плазмы пользуются вакуумным отсосом (рис. 32). При этом кровь в ампулы заготавливают обычным путем и консервируют на глюкозо-цитратном растворе с добавлением натрия-сульфатиазола.

После отсасывания плазмы ампулу с оставшейся в ней эритроцитарной массой вторично закрывают кольцом ниже места прокола трубки и заливают тубус расплавленным стерильным воском с парафином.

При втором способе заготовки консервированных эритроцитов после отсасывания плазмы в ампулу с оставшимися эритроцитами добавляют 10% раствор сахарозы с препаратом натрия-сульфатиазола.

Этот раствор в количестве, равном объему удаленной плазмы, вводят в ампулу следующим образом.

По окончании отсасывания плазмы зажимом пережимают трубку, через которую отсасывают плазму. Затем после обжигания и смазывания трубки настойкой иода последнюю прокалывают иглой, соединенной со специальной ампулой, содержащей указанный выше раствор сахарозы.

После введения сахарозы иглу извлекают, трубку пережимают кольцом, тубус ампулы заливают воском ц парафином.

Паспортизированные ампулы с эритроцитарной массой хранятся от 10 до 15 дней с момента заготовки при температуре 4—8°.

При переливании эритроцитов обязательны все пробы па совместимость крови донора и реципиента.

Наблюдения А. П. Лебедева показывают, что сам процесс трансфузии концентрированной эритроцитарной массы протекает в два раза медленнее, чем цельной крови. Методика трансфузии не отличается от обычной. Разведения эритроцитов физиологическим и другими растворами не требуется. Дозировка трансфузий эритроцитов колеблется, в зависимости от показаний, от 50 до 700 мл.

Переливание консервированной крови: показаниями к переливанию эритроцитарной массы являются:

1)   хронические анемии различного происхождения. Переливание эритроцитарной концентрированной свежей взвеси у этих больных дает лучшие по сравнению с трансфузией цельной крови результаты (Б. А. Петров, А.  П. Лебедев и др.). Дозы трансфузии в данных случаях составляют 50—250 мл, рекомендуются повторные переливания;

2)   продолжающиеся кровотечения (кровоточащая язва желудка, кишечные, геморроидальные и другие кровотечения). Переливание эритроцитов в этих случаях не приводит к острому повышению артериального давления. Вместе с тем оно обладает мощным гемостатическим эффектом (А. П. Лебедев). Дозировка трансфузий — 50—100 мл эритроцитов;

3)   лейкемии и лейкозы (X. X. Владос). Дозировка 100—250 мл эритроцитарной массы. Применяются повторные трансфузии;

4)   подготовка ослабленных, анемизированных больных к операции (доза 200—500 мл).

Следует подчеркнуть, что в связи с отсутствием быстрого повышения артериального давления, небольшим количеством реакций после переливания эритроцитарной массы и уменьшенным содержанием в ней белков плазмы показания к переливанию эритроцитов при сердечно-сосудистой недостаточности могут быть расширены по сравнению с показаниями к трансфузии цельной крови. Это же относится и к мозговым заболеваниям, сопровождающимся анемией (X. X. Владос, И. И. Юровская) .

Противопоказаниями, которые особенно должны учитываться при данном виде трансфузий, являются гемолитическая желтуха и гемоглобинурия различного происхождения.

Переливание консервированной крови: переливание человеческой плазмы и сыворотки

Известно, что человеческая плазма и сыворотка являются лучшими кровозамещающими средами. Опыты Д. Н. Беленького, С. В. Гейнац и С. С. Серебренникова, Б. Ю. Андриевского и др., работы сотрудников Центрального ордена Ленина института гематологии и переливания крови показали хорошее действие плазмы и сыворотки при кровопотере.

Клиническое применение плазмы и сыворотки чрезвычайно распространено. При этом простота трансфузия этих фракций крови и их хранения заставляет некоторых врачей, особенно в западных странах, расширять показания к переливанию плазмы и сыворотки за счет сужения показаний к трансфузии цельной крови. Это, однако, является неправильным, так как таким путем исключается введение эритроцитов — наиболее ценной части крови. Вместе с тем следует подчеркнуть, что переливание цельной крови и ее отдельных фракций имеет свои показания, которые всегда нужно учитывать в целях получения наибольшего эффекта.

Плазма является наиболее полноценной жидкой частью крови. Помимо белков, в ее составе находятся антитела, гормоны, тромбопластические субстанции.

Переливание консервированной крови: Сыворотка — это плазма, лишенная фибрина.

Отсутствие фибриногена в сыворотке говорит об ее неполноценности по сравнению с плазмой (меньший гемостатический эффект).

Приготовление плазмы и сыворотки для целей переливания требует соблюдения строгих правил. Главной опасностью при этом является бактериальное загрязнение, для предупреждения которого необходимо соблюдать следующее:

1)    повторно стерилизовать в автоклаве всю посуду;

2)   все моменты взятия крови проводить при строжайшем соблюдении асептики; отсасывать плазму и готовить сыворотку в специальном боксе;

3)   весь процесс, взятия и расфасовки плазмы и сыворотки поручать опытному персоналу.

Плазму и сыворотку переливают в консервированном виде. При этом процесс консервации может быть: а) простым, когда плазма и сыворотка готовятся в жидком состоянии, б) когда консервированная плазма и сыворотка замораживаются я в) когда плазма и сыворотка высушиваются.

Консервирование плазмы и сыворотки обычным способом в жидком состоянии.

Кровь для получения плазмы и сыворотки заготавливают отдельно. На стр. 83 приведена схема отсоса плазмы из ампулы, который производится через 1—3 суток после взятия крови, что необходимо для осаждения глобулярной массы. После отсасывания плазмы в специальные ампулы тубусы последних закрывают, затем ампулы паспортизируют согласно инструкции.

Плазма может сохраняться на леднике при температуре от —-4° до +8°. Однако часто через несколько недель в ней образуются хлопья фибрина. Поэтому нативную плазму, если есть уверенность в стерильности (после бактериологической проверки), лучше переливать в евежезаготовленном виде в течение нескольких суток.

Процесс приготовления жидкой сыворотки приблизительно тот же. Кровь собирают в сухую банку ЦИПК, в которую предварительно наливают 10 мл физиологического раствора (для лучшего отделения сыворотки от сгустка).

Сливание сыворотки в ампулы производят по описанному выше способу.

В целях удлинения сроков консервации и сохранения ее стерильности сыворотку пропускают через фильтр Зейтца (по инструкции Министерства здравоохранения СССР). Хранится сыворотка при температуре +4 4-6°, «о можно ее сохранять и при комнатной температуре. Срок годности сыворотки при пользовании фильтром Зейтца—10 месяцев.

Проверка пригодности плазмы и сыворотки должна производиться перед каждым переливанием. Центральный ордена Ленина институт гематологии и переливания крови рекомендует индивидуальный бактериологический контроль каждой ампулы.

Плазма и сыворотка непригодны, если имеются следующие признаки: 1) грубая муть и пленки, подозрительные на инфицирование; 2) образование в ампуле газов, которые определяются при ее открытии — хлопающий звук выстрела свидетельствует о скоплении в ампуле газов; 3) плохая укупорка ампулы (трещины, незапаянный тубус и т. д.; 4) неприятный запах.

Консервирование плазмы и сыворотки в заморожен ном состоянии производят при соблюдении описанных выше правил.

Необходимо при этом выполнять следующие условия (А. Н. Филатов): 1) консервировать только свежую плазму и сыворотку; 2) ампулы заполнять не полностью, а на 80—90% (в целях предупреждения разрыва ампулы в момент замораживания и оттаивания): 3) замораживание производить при температуре от —15° до —20°; 4) сохранять замороженную плазму и сыворотку в дальнейшем при постоянной температуре —15°; 5) производить быстрое оттаивание плазмы и сыворотки перед переливанием путем погружения ампул в теплую воду температурой 37—38° и встряхивания ампул; 6) производить фильтрование плазмы и сыворотки после оттаивания, если в них имеются хлопья.

Сроки сохранения замороженной плазмы и сыворотки увеличиваются до 6 месяцев и больше.

Высушивание плазмы и сыворотки. Существуют два способа высушивания плазмы и сыворотки: способ выпаривания при положительной температуре (Р. М. Розенберг из Центрального ордена Ленина института гематологии и переливания крови) и способ вакуум высушивания в замороженном состоянии (Л. Г. Богомолова из Ленинградского института переливания крови).

Сухую плазму и сыворотку можно хранить длительные сроки. Перед переливанием к сухой плазме и сыворотке добавляют физиологический раствор или дестиллированную воду.

Показания к переливанию плазмы и сыворотки самые широкие. Однако, как уже было сказано выше, следует помнить об отсутствии в них форменных элементов крови и поэтому к трансфузии жидкой части крови нужно прибегать в тех случаях, когда нет цельной крови, а также при особых показаниях. Специальными показаниями к переливанию плазмы и сыворотки являются:

1)    ожоговый шок, который всегда сопровождается плазмопотерей (см. главу VII); доза плазмы 400—500 мл повторно; травматический шок без кровопотери (показано капельное переливание массивных доз плазмы или сыворотки— до 1 — 1,5 л);

2)    гипопротеинемия при алиментарной дистрофии, раковой кахексии (переливание плазмы или сыворотки в дозах 400—500 мл повторно);

3)    кровотечение (гемостатическая доза плазмы и сыворотки 50—100 мл).

Последнее показание для трансфузии сыворотки имеет особо важное значение, так как возможность использования малых доз сыворотки при кровотечении имеется в каждом лечебном учреждении, а простота данного способа позволяет его применять в любых условиях.

Противопоказания к переливанию плазмы и сыворотки значительно не отличаются от таковых при переливании цельной крови.

Техника переливания плазмы и сыворотки проста. Пилкой отпиливают один из тубусов запаянной ампулы и на него надевают резиновую трубку системы для переливания крови. Второй тубус также отпиливают и покрывают стерильной марлевой салфеткой.

Определения групповой принадлежности сыворотки и плазмы не требуется — они могут рассматриваться как универсальная среда для трансфузии. Однако во всех случаях переливания плазмы и сыворотки в целях предупреждения белковой несовместимости требуется точное выполнение троекратной биологической пробы по описанной выше методике.

Переливание консервированной крови: введение кровозамещающих и противошоковых растворов

Введение вместо крови ее заменителей — различных изотонических растворов — в практике проводилось, начиная с XIX столетия. При этом, как было сказано в историческом очерке, вливания солевых растворов почти полностью вытеснили небезопасные для того времени трансфузии крови.

Однако дальнейший опыт применения солевых растворов показал их несовершенство. Выяснилась необходимость введения изотонических, так называемых эквилибрированных, растворов, различные рецепты которых предлагались раньше и продолжают поступать в настоящее время.

Необходимо подчеркнуть, что, несмотря на детальную разработку методики трансфузий, особенно консервированной крови и ее компонентов, потребность в полноценных кровозаменителях не уменьшалась. Эти растворы необходимы там, где нет крови, где имеются противопоказания для ее применения.

В настоящее время описано очень много различных растворов и жидкостей, предназначенных для внутривенного вливания.

Введение их имеет широкое распространение в медицинской практике ввиду простоты методики и возможности иметь в запасе и хранить длительное время ампулы со стерильными растворами.

Положительным качеством глюкозо-солевых растворов является возможность пополнения организма больного водой,

сахаром и солями. Пои введении серотрансфузина ЦИПК и жидкости И. Р. Петрова к этому добавляется пополнение организма больного белками человеческой сыворотки.

Специальные коллоидальные препараты, содержащие белки — сыворотка Беленького (о которой говорится в разделе гетеротрансфузий), аминокислоты — весьма полезны при гипопротеинемии, однако их действие уступает действию человеческой крови, плазмы и сыворотки.

При введении этих жидкостей наблюдаются реакции.

Спирто-глюкозо-солевые растворы Ленинградского института переливания крови предназначены для предупреждения и ликвидации шока. Их действие связано с влиянием спирта и других фармакологических средств на центральную нервную систему. Отрицательной стороной применения спиртсодержащих растворов является опасность развития флебитов и тромбоза вены на месте вливания при капельном, длительном введении этих жидкостей.

Противошоковые растворы, содержащие наркотические средства (Асратяна, Федорова, противошоковая жидкость № 28 ЛИПК), действуют при шоке на кору

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Таблица 3

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Состав некоторых кровозамещающих и противошоковых растворов и подкорковые центры головного мозга, выключают болевые рефлексы, вызывают сон.

В табл. 3 не вошли такие растворы, как раствор Бейлиса (содержащий гуммиарабик), сыворотка Норме (смесь солей лимонной кислоты), коллоидный инфузии ЦИПК и другие менее распространенные и имеющие ряд отрицательных свойств.

Необходимо еще раз подчеркнуть, что введение кровозаменяющих, противошоковых и белковых растворов не исключает трансфузий крови и не заменяет их. В хирургической практике следует шире пользоваться комбинированными способами, при которых вводят кровь, а затем какой-либо раствор или наоборот. В процессе операции иногда показано чередование трансфузии крови и инфузии кровозаменяющих растворов.

Переливание консервированной крови: основные понятия. Переливание плацентарной крови

Переливание плацентарной крови было впервые осуществлено и в дальнейшем изучено в СССР.

Плацентарная кровь — это кровь плода, остающаяся после родов в пуповине и плаценте. Она отличается от обычной крови донора своим морфологическим и биохимическим составом. В ней значительно больше эритроцитов (5 000 000—6 000 000) и гемоглобина (до 90—110%). При этом количество юных форм эритроцитов — ретикулоцитав в плацентарной крови значительно выше, чем в донорской, — оно достигает 38 ретикулоцитов на каждые 1 000 эритроцитов (Н. В. Попов). Цветной показатель плацентарной крови обычно выше единицы, РОЭ замедлена до 3—11 мм в час, по Панченкову, число лейкоцитов увеличено до 11 000—19 000. Лейкоцитарная формула характеризуется сдвигом влево. В среднем эта. формула представляется в следующем виде: нейтрофилов сегментоядерных 42%, палочкоядерных 10%, эозинофилов 3%. Количество тромбоцитов обычно равняется 300 000—400 000, свертываемость крови ускорена.

Агглютиногены плацентарной кропи выражены хотя и слабее, чем в крови донора, но все же достаточно отчетливо. Агглютинины имеют низкий титр, что может привести к сомнительным результатам при определении группы крови методом двойной агглютинации. Поэтому при определении группы плацентарной крови следует употреблять стандартные сыворотки высокого титра.

Важной особенностью плацентарной крови является наличие в ней большого количества гормонов — фолликулина и продана.

Все перечисленные качества плацентарной крови свидетельствуют о ее полноценности, а в некоторых случаях — и большей ценности, чем кровь донора.

Взятие этой крови безвредно для матери и ребенка и поэтому переливание плацентарной крови получило распространение в СССР и других странах. По данным ряда авторов, в крупных столичных городах можно получать значительное количество плацентарной крови, что является ценным дополнением к донорской крови.

В инструкции, опубликованной Министерством здравоохранения СССР в 1947 г., изложены правила взятия и переливания плацентарной крови, применяемые в Советском Союзе.

Заготовка плацентарной крови осуществляется в родильных домах при соблюдении строгой асептики закрытым методом.

Аппаратура — трубки и иглы — готовится так же, как и при взятии донорской крови. Склянка или ампула емкостью 120—200 мл монтируется так же, как и при консервировании донорской крови.

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 36. Взятие плацентарной крови.

Для стабилизации и консервирования плацентарной крови применяются: 6% раствор цитрата с натрием-сульфатиазолом, глюкозо-цитратный раствор и глюкозо-цитратно-солевой раствор (см. главу IV).

Спустя две минуты после рождения ребенка (от здоровой матери, яри условии нормальных родов) обрабатывают 95° спиртом пуповину ребенка и на расстоянии 10—15 см от пупочного кольца пересекают между двумя зажимами.

Материнский конец пуповины вторично обрабатывают спиртом, под него подкладывают стерильное полотенце. Затем в пупочную вену материнского конца вводят толстую иглу, соединенную с закрытой системой аппарата для взятия крови (рис. 36). Кровь собирают до тех пор, пока она идет струей, и все время вращательными движениями перемешивают ее с консервирующим раствором. Выжимание пуповины не допускается. После этого кровь из пуповины собирают в пробирки для определения реакции Вассермана и двух осадочных реакций, а также группы крови. Смену пробок, укупорку производят по описанной в главе IV методике.

Хранение плацентарной крови разрешается на леднике при температуре -40 +8°.

Для переливания плацентарной крови одногруппную кровь от нескольких рожениц фильтруют через 4 слоя стерильной марли и сливают в стандартную банку ЦИГЖ. После смешивания кровь нужно переливать немедленно.

Переливание консервированной крови: основные понятия. Обратное переливание крови

Обратное переливание крови было предложено В.  В. Сутугиным в 1865 г. Автор высказал мысль о целесообразности использования для целей переливания кровь, вытекающую из влагалища у рожениц. На протяжении истории развития метода обратного переливания крови было испытано много предложений. Произведены попытки переливания крови, собранной во время операции, обратного переливания крови, предварительно взятой у самого больного, и обратного переливания крови, излившейся в серозные полости.

Все эти способы в связи с прогрессом организации переливания консервированной донорской крови в настоящее время или же совсем оставлены, или имеют ограниченное применение.

Кровь, собранная во время различных операций, ввиду опасности инфекции, совершенно не используется.

Обратная трансфузия крови, взятой предварительно у самого больного, производится иногда как терапевтическое средство. При этом кровь стабилизируется с помощью цитрата и перед трансфузией облучается ультрафиолетовыми (в случае гнойной инфекции, трофических язв и других заболеваний) или рентгеновыми (при раке) лучами.

Несколько чаще производят переливание крови, излившейся в серозные полости.

В литературе имеются сообщения о переливании крови, излившейся в брюшную полость при ранениях печени и селезенки (С. И. Спасокукоцкий и В. Я. Брайцев, М. А. Топчибашев), о переливании крови при ранениях легкого и сердца (Т. Е. Гнилорыбов). Все эти казуистические сообщения не привлекли внимания практических хирургов, так как такие способы переливания крови сопряжены с большой опасностью для больного в связи с возможностью инфицирования крови и токсического ее действия.

По сводной статистике А. Н. Филатова и М. Е. Депп, из 815 ретрансфузий только у 71 больного (9%) она выполнена при повреждении внутренних органов. В 744 случаях (91%) обратное переливание крови производилось во время операции по поводу внематочной беременности.

Таким образом, в настоящее время метод обратного переливания крови используется главным образом при внематочной беременности.

Практическим врачам и патологоанатомам известен факт, что кровь, излившаяся в серозные полости, теряет способность свертываться. Предполагают, что причиной этого является постоянное соприкосновение крови с серозной оболочкой.

А. Н. Филатовым (1927) доказано, что дефибринизация крови происходит не только вследствие ее движения, но и в связи с соприкосновением ее с серозными оболочками. Процесс дефибринизации развивается не сразу. Он более выражен в крови, излившейся в брюшную полость, особенно в случаях обширного соприкосновения крови с брюшиной, а также при длительно протекающих небольших полостных кровотечениях. Необходимо отметить, что стерильная кровь относительно медленнее всасывается серозными полостями, чем другими тканями, на чем основаны предложения переливать кровь в плевральную полость.

Вместе с тем необходимо отметить, что при инфицировании крови в ней образуются сгустки и продукты токсического характера, развивается гемолиз, что весьма опасно при переливании такой крови.

Вот почему при необходимости перелить кровь, скопившуюся в брюшной полости после разрыва фаллопиевой трубы в случае внематочной беременности, всегда следует учитывать время, прошедшее с момента разрыва. По А. Н. Филатову, первые признаки гемолиза в такой крови обнаруживаются спустя 16 часов после разрыва трубы. Поэтому производить обратное переливание ни в коем случае нельзя, если с момента разрыва трубы прошло больше суток.

Вид крови также должен обращать на себя внимание: наличие больших сгустков, пленок фибрина препятствует трансфузии.

Желательно для определения гемолиза произвести центрифугирование необходимой порции крови.

Техника сбора и обратного переливания крови при внематочной беременности состоит в следующем. После вскрытия брюшной полости суповой стерильной ложкой кровь вычерпывают и выливают через большую воронку, накрытую 8 слоями марли, смоченной в 4% растворе цитрата в стандартную банку ЦИПК с налитым в нее предварительно 4% раствором лимоннокислого натрия из расчета 10 мл раствора на 100 мл крови. После сбора и фильтрования крови банку ЦИПК готовят к переливанию крови обычным способом.

При обратном переливании крови, сохранившей свои качества, при соблюдении правил сбора и фильтрования результаты достаточно хорошие. Поэтому данный метод можно рекомендовать, особенно в тех случаях, когда в распоряжении хирурга нет консервированной крови.

Переливание консервированной крови: основные понятия. Переливание гетерогенной крови и сыворотки.

Переливание иногруппной крови

Перед Великой Отечественной войной большое внимание уделяли трансфузиям несовместимой крови, которые назначались в целях стимуляции организма больного. В настоящее время эти переливания производятся реже.

Гетеротрансфузии крови. Переливания гетерогенной крови известны как первые попытки в истории развития этого метода (см. Краткий исторический очерк). Они выполнялись вначале с заместительной целью, однако, несмотря на повторную экспериментальную и клиническую разработку этого вопроса (Н. А. Богораз), опасные стороны подобных заместительных трансфузий, и наблюдающиеся при них смертельные осложнения заставили полностью отказаться от данного способа заместительных переливаний крови.

В настоящее время речь может идти лишь о стимулирующих, небольших гетеротрансфузиях

Обычно вводят кровь барана, консервированную на 5% растворе лимоннокислого натрия.

Первое переливание гетерокрови производят в дозе не больше 3—5 мл. Кровь вводят 10-граммовым шприцем медленно, с обязательным наблюдением за состоянием больного. Второе переливание повторяют через 6—7 дней, причем дозу крови повышают до 5—8 мл. При необходимости трансфузии производятся многократно, с небольшим увеличением дозы до 10 мл и с интервалами в 6—7 дней.

Обязательно наблюдение за больным во время трансфузии, а также исследование крови и мочи после каждого переливания.

Гетеротрансфузии крови применяются при язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки, хронических колитах и энтероколитах, гнойной раневой инфекции трофических язвах нижних конечностей.

Помимо гетерогенной крови, для трансфузий с давних времен применялась гетерогенная сыворотка,

но введение ее в больших дозах сопровождалось тяжелыми осложнениями и поэтому не получило распространения.

В 1943 г. Н. Г. Беленький предложил свой способ обработки сыворотки крупного рогатого скота, предупреждающий опасные последствия гетеротрансфузий. Как показали наблюдения Д. А. Арапова и др., сыворотку Н. Г. Беленького можно вводить больным внутривенно в больших дозах (до 4 л) без особых осложнений. При этом наблюдается увеличение процентного содержания белков крови, улучшение общего состояния больных.

В ряде случаев вливание сыворотки вызывает гиперемию лица, одышку, боли в голове и пояснице, температурные реакции.

Назначение сыворотки Н. Г. Беленького противопоказано при аллергических состояниях, активной форме туберкулеза, запущенном раке в стадии кахексии.

Показания к применению гетерогенной крови за последние годы сократились в связи с введением других, более рациональных методов общего воздействия на организм больного.

Противопоказаны гетеротрансфузии при тех же заболеваниях, которые служат препятствием для обычных переливаний крови, но особенно при активном туберкулезе легких, недостаточности функций печени и при поражении почечной ткани (К. В. Стройкова).

Переливание инотруппной (несовместимой) крови. Переливание несовместимой крови является, так же как и гетеротрансфузия, методом неспецифической протеинотерапии. После вливания терапевтических доз несовместимой крови (5—20 мл) вначале имеет место шок, или фаза угнетения, а затем наступает вторая фаза — стимуляции. По Н. М. Соколову, на 660 иногруппных переливаний зарегистрировано 60,8% легких, 20,7% средних и 2,5 % тяжелых реакций; в 16% реакция отсутствовала.

Таким образом, интенсивность реакции при этом методе переливания бывает различная,

что зависит от индивидуальных особенностей организма больного, титра агглютининов переливаемой крови и других факторов.

Обычно через 1—2 минуты после введения небольших количеств несовместимой крови появляется гиперемия лица, шеи, груди, затруднение дыхания, чувство жара, тахикардия, иногда боли в эпигастрии. Температура повышается до 38—39°. Вскоре все эти явления проходят и к вечеру остается лишь чувство слабости и разбитости. Последнее к следующему дню ликвидируется, улучшается самочувствие.

Начиная со следующего дня введения несовместимой крови, уробилин кала повышается до 180 мг% и к третьим суткам доходит до 430 мг%. Уробилин мочи повышается медленнее, со вторых суток, и не превышает 12,75 мг %.

Таким образом, это свидетельствует о гемолизе, наблюдающемся в первые дни после трансфузии иногруппной крови (К. В. Стройкова).

Переливание терапевтических доз иногруппной. крови применяется при тех же заболеваниях, что и гетеротрансфузии.

Переливание консервированной крови: капельное переливание крови и кровозамещающих растворов

Вопрос о необходимости непрерывного пополнения воды, минеральных солей и питательных веществ, недостающих в организме больного, возник давно. Однократные подкожные и внутривенные вливания при всей их полезности не давали результата вследствие кратковременного действия и перегрузки сердечно-сосудистой системы.

В результате повышения диуреза и потоотделения жидкость, введенная таким путем, быстро покидает русло крови и затем организм больного. Несколько более физиологичным оказалось вливание различных изотонических жидкостей, осуществляемое непрерывно, по каплям, в прямую кишку. Однако и этот способ не давал ожидаемого эффекта, потому что в ряде случаев, особенно при частом употреблении клизм, резко замедляется всасывание жидкостей через слизистую оболочку кишки. Кроме того, многие питательные и лекарственные вещества вообще не усваиваются через прямую кишку.

Метод длительных, капельных внутривенных вливаний физиологического раствора и глюкозы явился шагом вперед в этом важном вопросе. Экспериментальные и клинические исследования показали, что, в отличие от однократных вливаний, капельные перманентные инфузии стойко повышают водный баланс организма, особенно у обезвоженных больных. Вместе с тем организм больного также постепенно, без перегрузки, получает соли, сахар, медикаменты.

Начиная с 1935 г., капельное переливание крови вводится в ряде московских и ленинградских клиник, а затем становится достоянием широких кругов практических врачей. Особую, весьма положительную роль сыграл этот метод во время Великой Отечественной войны 1941 —1945 гг., когда он был использован при лечении многих тысяч тяжело раненых.

В настоящее время исключительная ценность капельного метода переливания крови не подлежит сомнению

о чем свидетельствуют чрезвычайно большие цифры капельных трансфузий при ряде самых разнообразных заболеваний.

В связи с тем, что капельные трансфузии крови очень часто используются в комбинации с капельными инфузиями различных изотонических растворов, данные методы нужно рассматривать в комплексе.

Техника капельных внутривенных инфузий и трансфузий крови. Применение капельного метода предусматривает ряд условий:

1)   возможность регуляции скорости поступления жидкости и крови в вену больного; при переливании крови регулирующие приспособления не должны травмировать ее;

2)   обогревание жидкости и крови должно быть равномерным; опасно перегревать кровь и жидкость;

3)   возможность пополнения аппарата без длительного перерыва вливания;

4)     возможность перемешивания ‘крови, для того чтобы воспрепятствовать осаждению форменных элементов в аппарате;

5)     асептичность вливания;

6)     изоляция крови и жидкостей от света (в случае добавления адреналина);

7)    удобство и портативность капельной аппаратуры. Существует много моделей капельных аппаратов. Первый капельный аппарат (1913) состоял из воронки и капельницы, соединенных системой резиновых трубок. Вполне понятны недостатки этого аппарата — отсутствие герметичности, плохая асептика и пр.

Переливание консервированной крови: основные понятия. Ирригатор с пробью

В 1927 г. был сконструирован советский капельный аппарат Токарева, значительно более совершенный и
удобный в практике (рис. 37). Он состоит из ирригатора— градуированного сосуда емкостью 1 л (1), винтового зажима (2), капельницы (3), обогревателя с термометром (4), стеклянной канюли (5) и резиновых трубок, соединяющих ирригатор с капельницей, затем с обогревателем и канюлей.

Обогреватель помещался в теплую воду, имеющую температуру 37—38°. Мариотт и Кеквик предложили свою, более сложную аппаратуру, предназначенную специально для капельных трансфузий крови (рис. 38). Она состоит из ирригатора (1), винтового зажима (2), капельницы (3), баллона с кислородом (4), соединенного при помощи системы
трубок (5) с дном аппарата над металлическим фильтром (6). Пропуская пузырьки кислорода через кровь, можно
было препятствовать осаждению эритроцитов.

Все эти аппараты имеют ряд недостатков, из которых основными являются сложность и неудобство практического использования. Кроме того, при капельном переливании крови, вследствие наличия капельницы, эти аппараты травмируют форменные элементы крови и особенно эритроциты. При использовании капельных аппаратов тысячи капель крови, проходя через капилляр капельницы, падают на поверхность крови и затем поступают в нижнюю трубку, канюлю и вену больного. Наши опыты по проверке многих капельных аппаратов, в том числе аппаратов Мариотта и Кеквика, Токарева и др., показали, что кровь, особенно длительно консервированная, травмируется в капельнице в большей или меньшей степени. При длительной (свыше 15 дней) консервации и при условии разбавления крови изотоническими растворами травмирование крови, выражающееся в ее гемолизе, увеличивается.

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 40. Аппарат Петровского для длительного переливания крови.

Такое же гемолизирующее действие оказывает взбалтывание крови пузырьками кислорода в аппаратуре Мариетта и Кеквика.

Нужно полагать, что каждое переливание крови, являющейся жидкой тканью организма, должно сопровождаться максимальными предосторожностями, гарантирующими этот живой трансплантат от разрушения и гибели.

Несоблюдение этих условий при переливании небольших
количеств крови обычно не ведет к серьезным осложнениям, так как вливаются малые дозы разрушенных форменных элементов, белков, гемоглобина. Однако даже
малые дозы гемолизированной крови у тяжело больных
могут привести к сильным реакциям и осложнениям, о чем неоднократно сообщалось в печати. При вливании больших доз эти опасности повышаются, так как даже незначительно гемолизированная и разрушенная кровь, введенная в
количествах, превышающих 1 л, имеет большую токсичность.

В этом мы убедились на собственном опыте в 1935 г.,

что было подтверждено в дальнейшем М. Г. Скундиной (Институт имени Склифосовского).

В связи с описанными недостатками капельной аппаратуры для целей длительных массивных трансфузий крови нами был предложен аппарат (рис. 40), состоящий из следующих деталей: ирригатора — двухтубусного сосуда емкостью 1 л, который подвешивается в марлевом футляре, воздушного счетчика, пробки со стеклянной трубкой, резиновой трубки длиной 0,75 м, винтового зажима, грелки и стеклянной канюли.

Воздушный счетчик аппарата (рис. 41) представляет собой стеклянный сосуд размером 2X4 см с двумя трубками. Одна из этих трубок впаяна в верхний полюс счетчика и проходит в его полости, не достигая дна на 0,5 см. Вторая трубка соединена с боковым отверстием в счетчике. Перед переливанием крови в счетчик наливается физиологический раствор в таком количестве, чтобы он на 1 см закрыл конец внутреннего капилляра.

Действие счетчика основано на следующем принципе. При вытекании из аппарата определенного объема крови: в верхней части ирригатора (там, где имеется воздух) создается отрицательное давление, после чего происходит присасывание воздуха из окружающей атмосферы. При этом воздух может пройти в ирригатор только по внутреннему капилляру через жидкость, на дне счетчика.

Пузырьки воздуха проскакивают от срезанного конца капилляра вверх к уровню жидкости в счетчике.

Каждому пузырьку воздуха соответствует приблизительно 5 капель. Отвинчивая и завинчивая винтовой зажим, можно изменять скорость переливания.

На рис. 42 показан более простой воздушный счетчик, который можно сделать в любой обстановке.

Можно также пользоваться простым аппаратом — ампулой ЦИПК с капельницей и винтовым зажимом (рис. 43).

Аппаратуру для капельных вливаний и трансфузий подготавливают так же, как и для простых переливаний крови. Затем ее собирают, по указанной выше схеме и промывают 4% раствором лимоннокислого натрия или физиологическим раствором поваренной соли.

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 42. Схема упрощенного воздушного счетчика.

Резиновую трубку аппарата прикрепляют к предплечью полосками липкого пластыря, так же укрепляют и канюлю вместе с основанием иглы.

При введении иглы в срединную вену локтевого сгиба всегда нужно помещать верхнюю конечность в шину Крамера. При более длительных капельных переливаниях крови и растворов необходимо применять венесекцию с введением в вену больного не иглы, а стеклянной канюли.

Опыт показал, что пребывание металлической острой иглы в вене свыше 5 часов почти всегда

приводит к травматизации интимы и к. образованию тромба. Это обстоятельство является одним из самых опасных моментов капельного метода, так как длительное пребывание инородного тела в вене больного и тромбоз могут вызвать эмболию. Это тяжелое, в большинстве случаев смертельное осложнение описано рядом авторов (Штраус, Фридрих и др.).

Экспериментальное и клиническое изучение данного вопроса показало, что при. капельных вливаниях и транс-

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 43. Ампула ЦИПК с капельницей.

фузиях тромбоз и эмболия стоят в связи со следующими факторами: 1) большой калибр вены и отсутствие в ней клапанов; 2) отсутствие лигирования периферического конца вены; 3) выбор конечности для вливания; 4) плохое качество канюли или иглы и плохая их обработка;

При длительных вливаниях и трансфузиях стеклянную канюлю лучше вводить в одну из мелких вен середины предплечья, так как вены голени больше склонны к тромбозу, чем вены предплечья. При невозможности трансфузии в вены предплечья можно использовать и вены голени.

Канюля представляет собой штыкообразно изогнутую стеклянную трубку с утолщением на конце. В отделении

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 44. Неправильное (1) и правильное (2) установление уровня жидкости в капельнице.

должны быть канюли разного калибра, с диаметром концов 0,05; 0,1; 0,2; 0,3 см. Изгибы канюли должны быть пологими, без резких углов, во избежание застоя крови. Канюли перед вливанием следует обработать 4% раствором лимоннокислого натрия или 3% раствором парафина в эфире. Диаметр сечения канюли должен быть равен диаметру вены.

Перед венесекцией определяют подходящую вену и ее клапаны.

Прием, позволяющий определить клапаны вены, описан выше. Методика венесекции и введения канюли описаны на стр. 60. Больному разрешают движения рукой и корпусом тела с поворотами на бок (садиться нельзя). При тугом введении канюли в вену предупреждается травма интимы, наступающая вследствие движений конца канюли.

Между клапанами и концом канюли образуется участок вены, свободный от крови больного и содержащий только жидкость или стабилизированную кровь. Венозный клапан при этом препятствует обратному току крови,

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 45. Схема введения канюли вверху

наблюдающемуся при натуживании, крике и кашле больного. Созданию такого свободного от крови участка вены способствует также лигирование периферического отрезка вены. На рис. 45 представлены моменты правильного и неправильного положения канюли в вене. Обращает на себя внимание, что при неправильном введении канюли кровь больного может проникать к концу канюли обратным током и сквозь щели между канюлей и стенкой вены снизу. Быстрое смешивание, вихревые токи и пребывание крови в области, хотя бы минимально поврежденной при разрезе стенки вены, а также попадание ее в канюлю приводит к тромбообразованию. Парафинирование канюли уменьшает опасность образования тромба.

Вливание гипертонических растворов или веществ, раздражающих интиму (спирт, пенициллин), способствует тромбообразованию. В этих случаях требуется осторожность и прекращение вливания при наличии признаков начинающегося флебита. Горячие растворы (выше 40°), как правило, приводят к флебиту и тромбозу.

Прекращение тока крови или жидкости во время капельного вливания при отсутствии дефекта в винтах, перегиба трубок и пр. чаще всего зависит от тромбоза вены у конца канюли. В этом случае нельзя повышать давление в аппарате, а нужно открыть винтовой зажим, осмотреть трубки и, если вливание или трансфузия остановились, окончательно- извлечь канюлю я ввести ее в другую вену.

Дозировка капельного вливания растворов и крови.

В среднем капельным методом производится вливание 2—3 л изотонического раствора за сутки. Отдельные хирурги описывают случаи, когда потребовалось вливание больших доз (7—10 л), но эти дозы не могут считаться оптимальными ввиду опасности перегрузки сердечно-сосудистой системы и отека легких и мозга.

Дозировка капельных трансфузий несколько иная. В течение суток обычно вводится 1,5—2 л крови, а в некоторых случаях 4—б л, что показано при массивных кровопотерях.

В ряде случаев, особенно во время операций, осуществляется 3—б-часовая трансфузия, за время которой больной получает 1—2 л крови.

В связи с этим скорость вливания и скорость трансфузии может быть различной.

При капельных вливаниях растворов: скорость инфузии в течение суток не меняется и в среднем обычно равняется 30—50 каплям в минуту, т. е. 90—150 мл жидкости, за час.

При переливаниях крови также нужно стремиться к введению крови в. количестве 30—50 капель в минуту, или 90—150 мл крови за час, однако нередко приходится увеличивать скорость трансфузии, открывая винт и пуская кровь струей.

Следует подчеркнуть необходимость очень медленного вливания жидкости и крови в начале и в конце капельного переливания с тем, чтобы дать возможность сосудистой системе и главным образом ее нервному аппарату приспособиться к новым условиям непрерывного обогащения сосудистого русла, жидкостью, кровью, солями.

Общая доза вводимой при инфузии жидкости может быть очень большой и достигать 30—40 л.

Средняя доза колеблется, в зависимости от показаний к вливанию, от 5 до 10 л. Общая доза крови при капельном переливании достигает в отдельных случаях 7—10 л. В среднем она равняется 1—1,5 л. Продолжительность капельных вливаний составляет иногда 15—20 суток, а в среднем равняется 5—7 дням. Длительность трансфузии может быть равной 4—5 дням, а в среднем составляет 5—12 часов.

Растворы, медикаменты и кровь, у потребляемые при капельном методе. Раствор ы. При капельном внутривенном вливании качество растворов имеет большое значение, так как вводятся большие количества жидкости и солей, а также потому, что вливание продолжается длительное время, и раствор в течение всего этого периода соприкасается с интимой вены.

Нередко при введении физиологического раствора поваренной соли наблюдается «солевая лихорадка», характеризующаяся ознобом, недомоганием, повышением температуры. Вот почему в настоящее время многие авторы рекомендуют так называемые эквилибрированные растворы, приближающиеся по своему ионному содержанию солей к человеческой плазме.

Практика показала хорошие-качества 4,5% раствора глюкозы, приготовленного на физиологическом растворе поваренной соли. Помимо того, что эта смесь содержит соли хлористого натрия и глюкозу — необходимые вещества при ряде заболеваний, добавление глюкозы к физиологическому раствору устраняет ацидоз, нередко возникающий при длительном вливании больших количеств хлористого натрия.

Кроме этого раствора, с успехом применяются различные сыворотки.

Несомненную ценность представляет капельное вливание человеческой плазмы и сыворотки, а также растворов сухой плазмы и сыворотки.

Количество крови. Учитывая заместительную роль массивных капельных трансфузий, при них рекомендуется применять свежецитратную или свежеконсервированную кровь.

Мы пользовались капельным переливанием свеже-консервированной крови (до 5 дней), биологические свойства которой не изменены. Можно также применять свежеконсервированную плацентарную кровь.

При капельном переливании длительно консервированной крови (свыше 20 дней) описаны сильные реакции
и осложнения, поэтому ее лучше переливать простым методом.

Вопрос о токсическом действии больших доз цитрата при капельном переливании крови не имеет особого
значения, так как лимоннокислый натрий быстро разрушается в организме и выводится с мочой. Постепенность его
введения капельным способом гарантирует от передозировки.

Действие капельного вливания различных медикаментозных средств отличается от обычного их эффекта при однократном введении. Изменяется сила реакции организма, главным образом сердечно-сосудистой системы, уменьшается в значительной степени токсичность препарата.

В настоящее время при капельных инфузиях и трансфузиях с успехом используют следующие средства.

При коллапсе и перитоните к раствору часто добавляют адреналин, супраренин, дигипурат, дигален, кардиазол
и др. При сердечно-сосудистых расстройствах вводят строфант, корамин, ревитан, симпатол, лобелии и т. д. Большое распространение получили эфедрин и эфетонин, похожие по своему действию при шоке на действие адреналина, но более стойкие в растворе и менее токсичные (А. Ф. Лепукалн, М. А. Бубнов, Б. В. Петровский и др.). Описаны капельные вливания препаратов мышьяка при сифилисе (Тцанк), стрептоцида при газовой гангрене (Д. А. Арапов), спирта при шоке, пеницил-

Переливание консервированной крови: основные понятия

Переливание консервированной крови: основные понятия

Рис. 46. Введение медикаментов путем прокола трубки во время капельного переливания крови.

лина при сепсисе и т. д. И. С. Жоровым (1933) разработан и введен в практику капельный эвипановый и гексеналовый наркоз.

Медикаменты можно вводить двумя способами: 1) в процессе капельного вливания или трансфузии тонкой иглой шприца «Рекорд» прокалывается резиновая трубка вблизи от ирригатора (для того чтобы раствор не поступал концентрированным) и медленно в струю; жидкости или крови вводится необходимое медикаментозное средство (рис. 46); 2) медикаментозное средство добавляется в ирригатор и смешивается с раствором.

Эта комбинация осуществляется, во-первых, путем смешивания крови с раствором, и, во-вторых, поочередным введением раствора и крови.

Длительное вливание крови, смешанной е раствором, должно применяться с большой осторожностью. Как показали опыты Н. Г. Беленького, любая консервирующая так называемая изотоническая среда не является строго изотоничной.

Чем больше этой среды при консервировании крови,

тем больше эритроцитов соприкасается с этим не всегда безразличным для них раствором. Происходит гемолиз, тем более выраженный, чем менее изотоничной была среда. Его же опытами, а также нашими наблюдениями было установлено, что взбалтывание крови резко ускоряет гемолиз. Гемолиз также ускоряется при длительном подогревании крови (А. Р. Галушко).

Капельное переливание крови, смешанной с изотоническим раствором, вследствие длительного взбалтывания крови, обогревания и длительного пребывания эритроцитов в соприкосновении с большим количеством раствора, может привести к нежелательным реакциям, поражению почек, желтухе и другим осложнениям. Поэтому кровь, смешанную е раствором, следует переливать быстро в короткие сроки (не более 3—4 часов). Кроме того, кровь лучше смешивать с изотоничными растворами, а не с растворами глюкозы, так как в смеси с глюкозой кровь дает наибольший процент реакций.

Поводом к переливанию крови, смешанной с раствором, может служить отсутствие нужного количества крови, а также опасность передозировки крови при переливаниях во время крупных операций.

Более выгодна вторая комбинация длительного переливания крови и вливания раствора. Вначале производят вливание раствора, а затем, когда весь раствор уйдет из ирригатора, закрывают винтовой зажим и в сосуд осторожно наливают кровь.

Следует повторить, что жидкости, содержащие спирт, при капельном вливании имеют,

наряду с положительными свойствами, и отрицательные. К ним прежде всего относится раздражающее влияние на интиму и возникающий через несколько часов после вливания флебит, перифлебит и тромбоз вены, иногда на протяжении Ю—15 см от места вливания. Аналогичное осложнение мы наблюдали и при капельном вливании пенициллина и сульфаниламидных препаратов.

Поэтому в случае необходимости вводить эти вещества следует тщательно наблюдать за веной, по которой идет раствор, и при ее воспалении прерывать инфузию.

Комбинация капельной инфузии растворов и переливания крови. Метод капель

В.ОК. 30.10.2016г.

ОПТ. ОК. 30.10.2016г.

Комментарии:

Добавить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован.